GB 23238—2021
前 言
本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。
本文件代替GB 23238—2009《种猪常温精液》,与GB23238—2009相比,除结构调整和编辑性改动 外,主要技术变化如下:
——删除了“原精液”“精子畸形率”的定义(见2009年版的3.1、3.5);
—增加了“种猪”“精子密度”“畸形精子”“混合精液”“批次”和“保质期”的定义(见3.1、3.3、3.6、 3.7、3.8、3.9);
——更改了“常温精液”“精子活力”和“前向运动精子数”的定义(见3.2、3.4、3.5,2009年版的3.2、 3.3、3.4);
——删除了“原精液”的要求(见2009年版的4.1);
删除了“外观”(见2009年版的4.2.1)“有效期”的技术要求(见2009年版的4.2.6): ——增加了深部输精的内容(见第4章);
——更改了“剂量”和“前向运动精子数”的技木要求(见第4章,2009年版的4.2); ——更改了“抽样方法”(见5.1,2009年版的5.1、5.2);
——更改了“检验类别”(见7.1,2009年版的6.2)“判定规则”(见7.2,2009年版的第7章); —增加了“型式检验”情况的描述(见7.1.2);
—更改了“标签”(见8.1,2009年版的8.1);
——增加了“随行文件”的条款(见8.2);
——更改了“包装”“贮存”和“运输”的条款(见9.1、9.2、9.3,2009年版的8.2、8.3、8.4); —增加了“保质期”的内容(见9.4);
—增加了“不合格产品处置”的要求(见第10章);
删除了“抽样”的内容(见2009年版的A.1);
—更改了“剂量”(见A.1,2009年版的A.2)“精子活力”(见A.2,2009年版的A.3)和“前向运动 精子数”的检测方法(见A.3,2009年版的A.4);
——更改了“精子畸形率”姬姆萨染色法的染色时间(见A.4.1.3b),2009年版的A.5.3c)]; —增加了“伊红苯胺黑快速染色法”的内容(见A.4.2);
删除了“种猪常温精液监督检验程序”的内容(见2009年版的附录B);
——增加了“精子质量分析仪检测精子密度的校正方法”的内容(见附录B)。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由中华人民共和国农业农村部提出并归口,
本文件及其所替代文件的历次版本发布情况为:
2009年首次发布为GB 23238-2009;
—-—本次为第一次修订。
工
GB 23238—2021
种 猪 常 温 精 液
1 范围
本文件规定了种猪常温精液的质量技术要求、抽样、试验方法、检验规则、标签和随行文件、包装、贮 存、运输和保质期、不合格产品处置。
本文件适用于商品化的种猪常温精液产品。
2 规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文 件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于 本文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
GB/T 8170 数值修约规则与极限数值的表示和判定
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
种猪 boar
体型外貌和性能质量符合本品种标准要求且具有种用价值的公猪。
注:来源于具有《种畜禽生产经营诈可证》和《动物防疫合格证》的种猪场或公猪站,或有资质的种猪性能测定站。 3.2
常温精液 liquid semen
采集的种公猪原精液经稀释,但未经低温冷冻处理,在常温(16℃~18℃)下保存的精液。 3.3
精子密度 semen concentration
每毫升精液中所含的精子个数。
3.4
精子活力 sperm motility
精液中前向运动精子活动的程度。
注:当精液温度在37℃左右时,以精液中前向运动精子数占总精子数的百分比表示。
3.5
前向运动精子数 number of progressively motile sperm
每剂量精液中呈前向运动精子的总数。
3.6
畸形精子 abnormal sperm
形态异常的精子。
注:包括但不限于大头、小头、原生质滴、卷尾、断尾等。
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3.7
混合精液 pooled semen
同一品种两头及以上种猪的精液混合物。
3.8
批次 batch
同一生产线、同一时间,使用同一份或混合精液稀释分装生产的一批常温精液产品。 3.9
保质期 shelf life
自产品生产之时起,在满足种猪常温精液产品规定的保存和运输条件下,其产品符合质量要求的最 长期限。
4 技术要求
种猪常温精液质量应符合表1的规定。
表 1 种猪常温精液质量要求
项 目 | 受体为引入品种、培育品种 | 受体为地方品种 |
常规输精 | 深部输精 |
剂量/mL | >80.0 | >60.0 | ≥40.0 |
精子活力/% | ≥60.0 | ≥60.0 | ≥60.0 |
前向运动精子数/(10°个/剂) | ≥18.0 | ≥12.0 | ≥10.0 |
精于畸形率/% | ≤.20.0 | .20.0 | .20.0 |
5 抽样
5.1 抽样方法
5.1.1 出厂检验
以每批次生产份数为基数,随机抽取样品,抽取份数取整数且不少于基数的10%。
5.1.2 型式检验
以每批次生产份数为基数,随机抽取样品,抽取份数取整数且不少于基数的15%。
5.2 抽样时间
产品分装后2 h至保质期截止前24 h,
6 试验方法
6.1 剂量
按附录A中A . 1的规定执行,
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6.2 精子活力
按A.2的规定执行。
6.3 前向运动精子数
按A.3的规定执行。
6.4 精子畸形率
按A.4的规定执行。
7 检验规则
7.1 检验类别
7.1.1 出厂检验
出厂检验项目为第4章规定的产品剂量、精子活力和前向运动精子数。
7.1.2 型式检验
型式检验项目为第4章规定的全部项目。产品正常生产时,至少每半年进行一次型式检验,若有下
列情况之一时,应进行型式检验:
a) 生产工艺及设备有重大变更时;
b) 所用生产原料有重大变化时;
c) 种猪发生疾病或统一注射疫苗时;
d) 停产3个月以上恢复生产时;
e) 出厂检测结果与上次型式检测结果有较大差异时;
f) 监督管理部门提出要求时。
7.2 判定规则
7.2.1 样 品 判 定 规 则
7.2.1.1 所检项目全部符合本文件规定时,则判定该样品合格。
7.2.1.2 检测结果中有任何项目不符合本文件规定时,则判定该样品不合格。若该样品在其保质期内 可进行复检,复检结果全部符合本文件规定时,则判定该样品合格,复检结果有任何项目不符合本文件 规定时,则判定该样品不合格:若该样品已不在其保质期内,则不得复检,
7.2.1.3 各项目检测结果的极限数值判定按GB/T 8170中修约值比较法执行。
7.2.2 每批次产品的判定规则
每个批次的产品中所有抽检样品合格,则判定该批次的产品合格;其中有任一抽检样品不合格,则 判定该批次的产品不合格。
8 标签和随行文件
8.1 标签
标签要求如下:
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a) 应易于识别,不易脱落或损坏。
b) 应使用规范的汉字对产品信息进行说明。
c) 应标识但不限于如下信息:
1) 产品通用名称、种猪品种及个体编号、生产企业名称及联系方式、生产时间、适用受体、授 精方式、保存条件、保质期,以及第4章规定的项目指标。
2) 非生产企业经营常温精液产品时,其标签信息还宜包括经营企业的名称和联系方式等。 若是混合精液,则应加以注明(可不注明种猪个体编号)。
3) 使用电子标签(如二维码标签)的标签信息至少应包括本条款规定的信息,还可包括生产 企业商标或徽标,以及可追溯的其他信息。
8.2 随行文件
随行文件至少应包括种畜禽生产经营许可证和动物防疫合格证的复印件,以及种猪系谱档案(混合 精液除外)等复印件。
9 包装、贮存、运输和保质期
9.1 包装
产品包装应为对精子无毒副作用的一次性塑料制品,可选用袋装、瓶装或管装,容量应大于第4章 中规定的对应产品最低剂量的110%。封口严密。
9.2 贮存
种猪常温精液应置于恒温箱中避光保存,恒温箱内温度应控制在16℃~18℃。保质期内每间隔 8 h~12 h应摇匀1次,
9.3 运输
种猪常温精液应置于16℃~18℃避光密封的容器中运输,运输过程避免强烈震动和碰撞。
9.4 保质期
生产企业应给出常温精液产品的保质期,保质期应不少于72 h。
10 不合格产品处置
不应出售和使用检验不合格的产品。不合格产品应按有关规定进行无害化处理。
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附 录 A
(规范性)
种猪常温精液产品质量检测方法
A.1 剂量
A.1.1 仪器设备
A.1.1.1 电子台秤;感量0.1 g。
A.1.1.2 恒温箱:17℃±1℃。
A.1.2 试验步骤
接通电子台秤电源,开机,检查电子台秤的运行情况。在18℃~25 ℃室温条件下,将电子台秤清 零后,从恒温箱中取出待检产品,置于台秤称量盘上,记录显示值为W1。使用与受检产品同一批次、未 使用的空包装,或全部项目检测完毕,倒出内容物清洗并干燥的空包装,置于电子台秤称量盘上,记录显 示值为Wz。
A.1.3 试验数据处理
剂量按式(A.1)计算:
W =W,-W … … … … … … … … … …(A.1)
式中:
W — -样品剂量值,单位为毫升(mL),计算时按1mL相当于1g进行换算;
W1——样品与包装的称量值,单位为克(g);
Wz——空包装的称量值,单位为克(g)。
计算结果保留至小数点后1位,按GB/T 8170的规定进行修约。
A.2 精子活力
A.2.1 仪器设备与耗材
A.2.1.1 精子质量分析仪:由相差显微镜、显示器和专用分析软件等组成。相差显微镜至少应配有 10倍、20倍的物镜镜头。专用分析软件的主要技术参数应为VCL不小于5μm/s、VSL不小于5μm/s、 STR=VSL/VAP不小于25%。精子质量分析仪可读取并显示多个视野的平均值。
注1:VCL为精子曲线运动速度。
注2:VSL为精子直线运动速度。
注3:VAP为精子平均运动速度。
注4:STR为精子直线运动速度与平均运动速度的比值。
A.2.1.2 恒温载物台:37℃±1℃。
A.2.1.3 恒温箱:17℃±1℃。
A.2.1.4 移液器:量程≤20 μL。
A.2.1.5 专用定容玻片:腔室高度20 μm±2 μm。
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A.2.2 试验步骤
按如下步骤进行检测:
a) 开启精子质量分析仪预热至少5 min,安装恒温载物台(带有恒温载物台的一体化仪器不需要 此步骤),开启恒温载物台电源开关,设置温度为37℃±1℃。
b) 检查物镜是否转换到相差显微镜头,必要时应按照说明书进行物镜校准并转换光圈模式,以达 到最佳备用状态;调节显微镜光源至适宜的亮度,将低倍物镜正对载物台的通光孔,调节物镜 与恒温载物台之间的最佳距离,观察视野明亮程度,通过调节聚光器,直至视野光线最佳。
c) 将专用定容玻片置于恒温载物台上预热,预热时间应大于1 min,
d) 从恒温箱中取出待检样品,在18℃~25℃室温条件下轻摇2 min~3 min,若样品包装为袋 装,则将空精液瓶置于恒温箱30 min以上,再将袋装精液转移至精液瓶中,置于恒温箱中, 待检。
e) 保持精液瓶与视线水平,使其倾斜约45°,将移液器的吸头伸入液面下15 mm~20 mm处,避 开凝结絮状物,吸取3 μL~5 μL样品,滴于专用定容玻片进样口处,让其自行流入腔室,待检 (样点1);用同样方法吸取3μL~5μL样品,滴于专用定容玻片另一腔室的进样口处,待检 (样点2),
f) 点样后预热1min~3 min,在200倍条件下,按照操作要求在3 min内完成样点1和样点2的 检测。
g) 每个样点至少读取3个视野的数据,记录每个样点的平均值。
A.2.3 试验数据处理
精子活力按式(A.2)计算:
式中:
M - 精子活力,%;
… … … … … … … … … …(A.2)
M;——仪器给出的祥品平行样样点1检测活力的平均值,%;
Mz——仪器给出的祥品平行样样点2检测活力的平均值,%。
计算结果保留至小数点后1位,按GB/T8170的规定进行修约。若两个样点计算结果相对偏差大 于5%,则应重检。
A.3 前向运动精子数
A.3.1 仪器设备与耗材
A.3.1.1 精子质量分析仪:由相差显微镜、显示器和专用分析软件等组成。相差显微镜至少应配有
10倍、20倍的物镜镜头,具有精子密度的检测功能,精子密度的校正方法见附录B。 A.3.1.2 移液器:量程≤20 μL。
A.3.1.3 专用定容玻片:腔室高度20μm±2 μm。
A.3.2 试验步骤
A.3.2.1 参照附录B的规定对精子质量分析仪进行校正,每年至少校正一次。
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A.3.2.2 精子密度检测按如下步骤:
a) 按照A.2.2a)~e)规定的步骤操作,直至完成样品的点样;
b) 点样后预热1min~3 min,在200倍条件下,读取并记录精子密度值,记为Di。
A.3.3 试验数据处理
每剂量中精子总数按式(A.3)计算:
S=D;×W … … … … … … … … … …(A.3)
式中:
S 每剂量中精子总数,单位为亿个(10§个);
D:—-仪器显示的精子密度值,单位为亿个/毫升(10δ个/mL);
W—-样品剂量的实测值,单位为毫升(mL)。
精子密度值(D;)和每剂量中精子总数(S)应保留至小数点后3位,
前向运动精子数按式(A.4)计算:
C=S×M … … … … … … … … … … ( A.4)
式中:
C—-前向运动精子数,单位为亿个(108个);
M—-精子活力检测值,%。
用两个平行样的平均值表述样品检测结果,计算结果保留至小数点后1位,按GB/T 8170的规定 进行修约。若两个平行样之间的相对偏差大于5%,则应重检。
A.4 精子畸形率
A.4.1 姬姆萨染色法(仲裁法)
A.4.1.1 仪器设备与耗材
A.4.1.1.1 | 显微镜:物镜倍数为10倍、40倍, |
A.4.1.1.2 | 电子台秤:感量0.01 g。 |
A.4.1.1.3 | 载玻片。 |
A.4.1.1.4 | 计数器。 |
A.4.1.1.5 | 容量瓶:100 mL。 |
A.4.1.1.6 | 研钵。 |
A.4.1.1.7 | 移液器:量程≤20 μL, |
A.4.1.2 试剂或材料
下面检测方法除非另有说明,仅使用分析纯试剂。
A.4.1.2.1 水:GB/T 6682,三级水。
A.4.1.2.2 磷酸盐缓冲液:称取0.55g磷酸二氢钠(NaH2PO. ·2H2O),2.25g磷酸氢二钠(Na₂HPO · 2H2O),置于容量瓶中,用水溶解并定容至100 mL。
A.4.1.2.3 姬姆萨原液:称取1.0g姬姆萨染料,量筒量取66.0 mL甘油,66.0 mL甲醇。将姬姆萨染料 放入研钵中,加少量甘油充分研磨至无颗粒,将甘油全部倒入,放入恒温箱中保温溶解4 h,再加甲醇充 分溶解混匀,过滤后贮存于棕色瓶中,贮存时间越久染色效果越好。商品化试剂按说明书配制使用。
A.4.1.2.4 姬姆萨染液:量取2.0 mL姬姆萨原液,3.0 mL磷酸盐缓冲液,5.0 mL水,混合摇匀,现配现
GB 23238—2021
A.4.2.2 试剂或材料
下面检测方法除非另有说明,仅使用分析纯试剂。
A.4.2.2.1 水:GB/T 6682,三级水。
A.4.2.2.2 伊红Y染色液:将0.67g伊红Y和0.9g氯化钠溶入100 mL纯水中。
A.4.2.2.3 伊红苯胺黑染色液:将10g苯胺黑加入100 mL伊红Y染色液中,加热至沸腾,然后冷却至 室温,用滤纸过滤,储存于黑色密封玻璃瓶中。商品化试剂伊红苯胺黑染色液按说明书配制或使用。
A.4.2.3 试验步骤
按如下步骤进行检测:
a) 按照A.2.2d)~e)规定的方法吸取30μL样品和10μL伊红苯胺黑染色液,放入离心管中,轻 摇混匀,制成精液、伊红苯胺黑染色液的混合液,放置30 s~60 s;
b) 用移液器吸取10μL精液、伊红苯胺黑染色液的混合液,滴于载玻片一端,按A.4.1.3a)规定的 方法制作2个抹片;
c) 按A.4.1.3c)的规定对2个抹片分别进行镜检。
A.4.2.4 试验数据处理
按A.4.1.4的规定执行。
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A.4.2.2 试剂或材料
下面检测方法除非另有说明,仅使用分析纯试剂。
A.4.2.2.1 水:GB/T 6682,三级水。
A.4.2.2.2 伊红Y染色液:将0.67g伊红Y和0.9g氯化钠溶入100 mL纯水中。
A.4.2.2.3 伊红苯胺黑染色液:将10g苯胺黑加入100 mL伊红Y染色液中,加热至沸腾,然后冷却至 室温,用滤纸过滤,储存于黑色密封玻璃瓶中。商品化试剂伊红苯胺黑染色液按说明书配制或使用。
A.4.2.3 试验步骤
按如下步骤进行检测:
a) 按照A.2.2d)~e)规定的方法吸取30 pL样品和10μL伊红苯胺黑染色液,放入离心管中,轻 摇混匀,制成精液、伊红苯胺黑染色液的混合液,放置30 s~60 s;
b) 用移液器吸取10μL精液、伊红苯胺黑染色液的混合液,滴于载玻片一端,按A.4.1.3a)规定的 方法制作2个抹片;
c) 按A.4.1.3c)的规定对2个抹片分别进行镜检。
A.4.2.4 试验数据处理
按A.4.1.4的规定执行。
9
附 录 B
(资料性)
精子质量分析仪检测精子密度的校正方法
B.1 方法提要
分别采用血球计数法和仪器法对同一份精液样品进行精子密度检测,对比两个检测结果,结果之间
的相对偏差小于5%时,完成仪器校正。
B.2 血球计数法检测
B.2.1 仪器设备与耗材
B.2.1.1 显微镜:物镜为10倍、40倍。
B.2.1.2 电子天平:感量为0.01 g。
B.2.1.3 计数器。
B.2.1.4 移液器:量程1000μL和200 μL。
B.2.1.5 容量瓶:100 mL。
B.2.1.6 血球计数板。
B.2.1.7 盖玻片。
B.2.1.8 离心管:1.5 mL或2 mL。
B.2.2 试剂
下面检测方法除非另有说明,仅使用分析纯试剂。
B.2.2.1 水:GB/T 6682,三级水。
B.2.2.2 3.0%氯化钠溶液:称取3.0g氯化钠,用水溶解并定容至100 mL。
B.2.3 试验步骤
按如下步骤进行检测:
a) 吸取950pL3.0%氯化钠溶液放入离心管中,按照A.2.2d)~c)规定的方法取50 μL样品与
950 pL 3.0%氯化钠溶液充分混合均匀,制成试样。
b) 用盖玻片将血球计数板计数室盖好。吸取30 μL~50 μL试样置于血球计数板一端计数室的 边缘,让试样自行流入,使其充满计数室,计数室内不应有气泡。用同样方法在血球计数板另 一端计数室点样后,静置约5 min。
c)将点好样品的血球计数板置于载物台上,先用低倍镜找计数室,再切换至400倍的条件下
观察。
d) 采用边观察、边计数的方法,用计数器清点计数室的精子个数。每个计数室观察5个中方格, 5 个中方格分别为计数室的左上角、右上角、正中间、左下角和右下角。精子计数均以精子头 部所处的位置为准,每个中方格内的精子均为计数范围,方格压线的精子计数遵循“数上不数 下,数左不数右”的原则。分别记录两个计数室5个中方格的总精子数,并取其平均值,记 为T,。
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GB 23238—2021
B.2.4 试验数据处理
精子密度按式(B.1)计算:
S=T×5×20×10⁴×108 … … … … … … … … … …( B. 1)
式中:
S — 精子密度,单位为亿个/毫升(108个/mL);
T; ——两个计数室中5个中方格总精子数的平均值,单位为个;
5 —-- 5个中方格精子数转换成25个中方格的倍数;
20 ——精液稀释倍数;
104 ——体积单位换算;
10-8 —-密度单位换算。
计算结果保留至小数点后3位,按GB/T 8170的规定进行修约。两个计数室中5个中方格总精子 数(T;)之间的绝对差值应不大于5个,否则应重检。每份样品检测2次,2次检测结果之间的相对偏差 应小于5%,否则应重检,用2次检测结果的平均值表示该样品的检测结果。同一份样品至少应由两人 进行精子密度的检测,两人检测结果之间的相对偏差应小于5%,否则应重检。当检测结果满足本条要 求时,取其平均值作为血球计数法的最终检测结果。
B.3 仪器法检测
对血球计数法中的同一样品,按A.3.2.2的步骤检测精子密度,至少2次。仪器检测结果之间的相 对偏差应小于5%,否则应重检。当检测结果满足本条要求时,取其平均值作为仪器法的最终检测 结果。
B.4 比对校正
将血球计数法和仪器法的最终检测结果进行比对,若两者之间的相对偏差小于5%,则精子质量分 析仪完成校正。否则应按照精子质量分析仪的参数设置程序,调整精子密度检测的相关参数,并重复 B.3的步骤,直至血球计数法和仪器法检测结果之间的相对偏差小于5%。